CULTIVO DE GLADIOLO Preparación de los cormos

  

CULTIVO DE GLADIOLO

Preparación de los cormos

Tiene por objeto, después de la plantación, el permitir una aparición

más rápida y regular y un mejor crecimiento. Los cormos son

conservados a temperaturas medias (10-15ºC) o más bajas (un mes a

5ºC), y cinco o seis semanas antes de la plantación son colocados en

las siguientes condiciones:

Temperatura superior a 20ºC.

Humedad relativa del orden del 80%.

Es conveniente solicitar al proveedor si este tratamiento se dio para

saber si podemos obtener flores con mayor anticipación. También es

necesario saber si la variedad responde a este estimulo.

La floración avanza entonces de quince a veinte días; por tanto se

trata de un cultivo temprano (y no forzado, ya que no provocaría la

iniciación floral) y se aplica solo a ciertos cultivares.

6.8. Profundidad de plantación

De acuerdo a la época de plantación puede variar entre 5 a 15 cm de

profundidad, aumentándola en los períodos de mayores temperaturas.

También en suelos más livianos (arenosos) la profundidad es mayor

que en suelos más arcillosos.

6.9. Desinfección de cormos

Elaborar una solución compuesta por 80 gramos de Captan más 40

gramos de Benlate por 10 litro de agua, sumergirlos por 15 a 20

minutos. Lo ideal es agregar un surfactante a la solución y agitarla

permanentemente. También se puede adicionar un insecticida tal

como: Actellic (30 cc en 10 L agua).

Los cormos deben pelarse antes de la desinfección y descartar

aquellos enfermos si vienen de un proveedor que no pelado los

cormos.

6.10. Calibres

Para el cultivo de flor cortada se emplean cormos de calibre: 6/8 en

adelante y de variedades adaptadas. Considerando que a mayor

calibre mayor calidad de flor. Planta más recia, espada más fuerte,

floración más agrupada, y período de floración más corto.

El período crítico es mejor soportado por un cormo grande que por un

cormo pequeño dado su mejor poder vegetativo. A mayor calibre

mayores brotes laterales.

Fuente: CULTIVO DE GLADIOLO

PROYECTO ESTRATÉGICO PARA LA SEGURIDAD ALIMENTARIA

UNIDAD TÉCNICA NACIONAL

REGIÓN ALTOS DE CHIAPAS.

Tuxtla Gutiérrez, Chiapas.

CRISANTEMO USO DE REGULADORES DE CRECIMIENTO

CRISANTEMO

1. GENERALIDADES, TAXONOMÍA Y MORFOLOGÍA

USO DE REGULADORES DE CRECIMIENTO Para el aumento de la longitud del tallo pueden emplearse giberelinas, en forma de giberelato potásico, a concentraciones de 1,5 a 6 ppm, de 1 a 3 días después de la plantación, repitiendo la aplicación unas tres semanas después. Si lo que se desea es alargar el pedúnculo de los pompones, puede pulverizarse la parte superior de la planta con ácido giberélico, hasta el punto de saturación, 4 semanas después del inicio de los días cortos. Si se sobrepasan las 4 semanas, pueden producirse inflorescencias débiles, siendo el tratamiento más efectivo durante períodos de alta energía radiante. Con objeto de acortar el pedúnculo en los crisantemos "estándar" puede aplicarse ácido succínico-2, 2-dimetilhidracida, justo después del desbotonado, a 2.500 ppm en pulverización hasta el punto de saturación. Así se reduce la división y alargamiento de las células en la zona situada justo debajo de la inflorescencia, donde el alargamiento se produce rápidamente cuando las florecillas se están desarrollando activamente. Para el inicio de la raíz la hormona más utilizada es el ácido indolbutílico (AIB) mezclado con talco (1-2 mg de AIB/g de talco), al 0,1-0,2 %. La iniciación floral puede inhibirse con la aplicación de etileno (3-4 ppm).

6. RECOLECCIÓN Y CUIDADOS POSTERIORES

La recolección de las flores se efectúa cuando los "pétalos" exteriores se han expandido totalmente y aún se están extendiendo los interiores. Los "spray" se seleccionan cuando tres o más de las "flores" superiores están en este estadio. Los tallos se quiebran cerca de la base de la planta o se cortan con tijeras de podar. Se van haciendo ramos con los tallos cortados y luego se colocan en un cubo de agua o se llevan directamente al área de empaquetado. En este área se coloca la base de los tallos en agua hirviendo durante 30 segundos, llevándolos posteriormente a cubos con agua que contenga algún desinfectante, como puede ser la lejía.

Las flores pueden almacenarse en frío durante dos semanas a 2-3 ºC, con los tallos en agua, pero las flores deben estar secas y haber sido sometidas a un tratamiento fungicida de prerrecolección.

En tiempo cálido, las flores deben enfriarse antes del empaquetado, ya que debido a la respiración pueden calentarse durante el transporte. También es recomendable enfriar las cajas vacías antes del empaquetado para que estén a la misma temperatura que las flores.

El empaquetado de las flores puede realizarse con mangas de plástico, colocando normalmente cinco tallos por manga, de forma que los ramos sean siempre del mismo color. En el método tradicional, se toman flores individuales y se colocan en capas de forma alterna a cada extremo de la caja., colocando una pieza de papel bajo el pedicelo en la capa del fondo a ambos lados para soportar el tallo y evitar que la flor sea aplastada o partida.

PLAGAS, ENFERMEDADES Y FISIOPATÍAS

Los crisantemos son plantas que se ven afectadas por numerosas plagas y enfermedades, debiendo mantener un especial énfasis en la sanidad, ya que es importante tanto la calidad de las flores como de las hojas.

7.1. PLAGAS

7.1.1. Insectos Entre los insectos succionadores se incluyen numerosas especies de pulgones, trips, chinches, moscas blancas, etc., que producen daños directos por succión de la savia y deformación de hojas y flores. Los pulgones además producen daños indirectos como vectores de virosis y deben realizarse tratamientos con productos sistémicos u organofosforados de contacto cuando se observen las primeras colonias. Los insectos masticadores engloban al gusano soldador de la remolacha, gusano medidor de la col, mosquito agallador, gusano pelotero, minadores de hoja, escarabajos, etc.

Fuente: CRISANTEMO

1. GENERALIDADES, TAXONOMÍA Y MORFOLOGÍA

EL CULTIVO Y MANEJO DE LA ALSTROEMERIA

  

EL CULTIVO Y MANEJO DE LA ALSTROEMERIA

Humedad La humedad idónea es entre el 70-80%. Aunque la Alstroemeria no es muy susceptible al hongo Botrytis, se recomienda mantener la humedad por debajo del 90% durante el invierno. La humedad alta produce tallos más largos y asimismo hojas más largas y frágiles. Al principio de la primavera, en los primeros días calientes del año, unas cuantas variedades son susceptibles a el Stagonospora sacchari, el hongo causante de la quemazón o chamuscado de la hoja. Para preparar las plantas a esas circunstancias, se recomienda ventilar y/o calentar un poco más en los días y noches cuando el contenido en humedad está por debajo de un 85-87%. El uso de los ventiladores en el invernadero puede también mejorar la situación. A pesar de eso, es muy difícil prevenir este problema en el primer día de sol después de un período con el cielo cubierto. Por otra parte, en días muy soleados en la primavera, cuando la humedad relativa cae por debajo de un 70%, se recomienda la utilización de un aspersor o una pantalla (Konst, 2009).

CO2

El añadir CO2 en los invernaderos mejorará la calidad del cultivo y aumentará los rendimientos en un 10-20%. Se debe mantener la concentración de CO2 hasta 350-400 ppm en el verano y comprobar que no tenga las ventanas abiertas más de un 20%. Con ventanas cerradas en el invierno, la concentración mayor es entre 600-800 ppm. Las concentraciones de CO2 superiores a 1000 ppm, no producen ningún efecto positivo o negativo en las plantas (Konst, 2009).

Iluminación

La Alstroemeria responde bien a alta intensidad de luz y puede ser cultivada al aire libre a pleno sol si la superficie del suelo se cubre con acolchado y se proporciona el agua adecuada. Dependiendo del cultivar, la longitud de los tallos florales puede ser acortada a través de altas intensidades de luz. Si las plantas van a ser cultivadas en áreas o épocas de baja irradiación, irradiaciones suplementarias de aproximadamente 600 pie-candeales (unos 6500 lux) a la altura del dosel y un fotoperíodo aumentado (16 horas) acelerará la floración y aumentará la producción de flores. Plantas que se exponen a irradiación suplementaria en el otoño florecerán hasta 12 semanas antes que plantas cultivadas bajo días naturales; los rendimientos también aumentarán por lo menos 30%. La respuesta a la irradiación adicional no ocurrirá si las plantas no se inducen previamente con temperaturas frescas; esto confirma el papel secundario de la luz en el mecanismo de la floración (Bridgen, 1999).

Si la Alstroemeria no puede recibir irradiación suplementaria desde luces de descarga de alta intensidad (HID), hay todavía alguna ventaja al proporcionar días largos con luces incandescentes. Plantas que reciben 16 horas de luz por día florecerán más rápidamente que plantas que reciben menos de 13 horas. La extensión de longitud del día puede ocurrir por medio de interrupción de la noche o por prolongación del día. La iluminación artificial no debe ser suplementada antes de 45-60 días después de plantar (Bridgen, 1999).

Con la iluminación HDI hay que mantener la temperatura del suelo en el invierno entre 14 -15,5 °C para asegurar una vegetación y calidad suficiente desde enero hasta marzo. En el caso de que no se pueda mantener la temperatura del suelo, es mejor limitar la duración del día a un máximo de 14 horas. También es importante prevenir que las temperaturas del suelo asciendan demasiado en el invierno, lo que puede ocurrir fácilmente con plantas que se encuentren por debajo de una pantalla si las temperaturas exteriores son moderadas. Las temperaturas por encima de 15,5 °C durante las semanas al final de diciembre y en enero pueden producir el resto del año múltiples tallos ciegos o más delgados (Konst, 2009).

Fuente: UNIVERSIDAD DE CHILE

FACULTAD DE CIENCIAS AGRONÓMICAS

ESCUELA DE AGRONOMÍA

EL CULTIVO Y MANEJO DE LA ALSTROEMERIA

Carolina Osorio C.

SANTIAGO – CHILE

EL CULTIVO DE LAS HELICONIAS

  

EL CULTIVO DE LAS HELICONIAS

INFLUENCIA DE LAS CONDICIONES

AMBIENTALES SOBRE EL CRECIMIENTO

Y LA FLORACIÓN

Debido a su centro natural de origen, las heliconias presentan exigencias ecológicas muy definidas, áreas con altas temperaturas y abundantes precipitaciones de los países tropicales, pero pueden cultivarse en cualquier lugar, cuya temperatura media sea de unos 20°C, siempre que exista una abundante humedad edáfica. El clima ideal para el cultivo de estas especies será aquel en el cual la temperatura varía entre una mínima de 18°C y una máxima de 34°C, además de abundante precipitación uniformemente distribuida a lo largo del año. Cuando se presentan temporadas de sequía, es necesario aportar el agua requerida a través del riego. Algunas especies como las H. apectabilis y H. aureo-striata agradecen una exposición sombreada.

La mayor parte de las heliconias cultivadas comercialmente crecen al aire libre, observándose las producciones más altas en zonas de elevada luminosidad, aunque para algunos cultivares las coloraciones de brácteas más intensas se consiguen bajo sombreo (17). Los mismos resultados han sido obtenidos en el sur de Florida (12), donde H. psittacorum ‘Andromeda’ produjo, en el primer año, de tres a cuatro veces más a pleno sol que con el 63 % de sombreo y el doble en el segundo año.

La sombra que producen las propias plantas reduce la producción incluso a pleno sol. Con altos niveles de fertilización (650 g N/m2 y año), H. psittacorum ‘Andromeda’ llega a tener más de 700 pseudotallos/m2 en el segundo año de cultivo, y en estas condiciones la luz recibida por las hojas es insuficiente, los pseudotallos se vuelven débiles y excesivamente largos, y disminuyen tanto la producción como la calidad (18). Ellos obtuvieron en el sur de Florida mayor producción anual al aire libre, con temperaturas inferiores a las óptimas que al cultivar en invernaderos con 80 % de transmisión lumínica y calefacción, por ser dicha transmisión insuficiente en invierno.

En diversas especies de heliconias, se observó que la eficiencia fotosintética y el contenido de clorofila de las hojas eran menores cuando las plantas estaban a pleno sol, que cuando se encontraban bajo una ligera sombra (8).

No obstante, ellos encontraron posteriormente que esto solo se producía cuando el aporte de nutrientes a las plantas era limitado y que la fotoinhibición de las plantas

a pleno sol desaparecía al aplicar nutrientes y, en particular, nitrógeno (22).

Muchas especies: H.psittacorum, H.x nickeriensis, H. episcopalis, H. hirsuta, H. x ‘Golden Torch’, H. chartacea, algunos cultivares de H. stricta y H. bihai, florecen duran

durante todo el año bajo intensidades de luz apropiadas y se han considerado de día neutro o no fotoperiódicas (17, 23).

Sin embargo, en Hawai la producción de flores de H. chartacea es más baja en primavera, con mayor número de hojas previas que en invierno. Al estudiar estos

brotes, se observó una alta proporción de ápices florales abortados, por lo que teniendo en cuenta el tiempo de desarrollo de los brotes, se sugiere que el fotoperíodo durante el invierno debe ser demasiado corto para permitir el desarrollo de las inflorescencias iniciadas (24).

Otras heliconias tienen una floración marcadamente estacional y se ha demostrado su control fotoperiódico.

H. stricta ‘Dwarf Jamaican’ es una planta de día corto facultativa, que debe tener por lo menos tres hojas para responder a las condiciones inductivas: cuatro semanas de noches largas a 15ºC (25).

Posteriormente, se ampliaron estos datos demostrando que se requieren de 15 a 19 semanas para que las flores lleguen a la antesis, que el porcentaje de yemas inducidas a flor disminuye al elevar la temperatura nocturna de 15 a 25ºC y que la proporción de yemas florales abortadas crece con la temperatura media (26).

Son también especies de día corto H. wagneriana, que requiere para florecer entre 100 y 150 días cortos, dependiendo del cultivar (27), H. aurantiaca (28) y H. rostrata (29).

H. angusta ‘Holiday’ muestra también una marcada estacionalidad, floreciendo durante los meses de otoño-invierno.

Los trabajos realizados por Sakai y Kwon han encontrado que las flores se inducen seis meses antes, durante los días largos del año, la longitud crítica del día es de 13.3 horas y el período de desarrollo de la flor 16 a 19 semanas (29).

No existen evidencias de que la temperatura incida sobre la inducción floral de las heliconias, si bien se ha observado que su aumento puede elevar indirectamente la producción de flores, debido a su efecto sobre el crecimiento de las plantas (17; 30).

Las temperaturas óptimas de cultivo varían con las especies y cultivares. Algunos, como H. stricta ‘Dwarf Jamaican’ y H. angusta ‘Holiday’, crecen y florecen a 15ºC, si bien su óptimo crecimiento se producirá sin duda a temperaturas superiores (17). El aumento de temperatura de 15 a 21ºC elevó la producción de flores de H.psittacorum ‘Tay’ más del doble y la de H. aurantiaca en un 20 % (28, 31). Para H. psittacorum se recomienda mantener temperaturas mínimas por encima de 21ºC, la producción crece hasta los 35ºC (18, 32).

La temperatura es el mayor factor limitante del cultivo de H. psittacorum en algunas zonas de Florida, disminuyendo su crecimiento y floración cuando baja de 21ºC.

Por debajo de los 10ºC, las plantas cesan de crecer y aparecen pequeñas manchas negras en el raquis floral junto a la inserción de las brácteas. Los rizomas pueden sobrevivir hasta 1-2ºC (12). Estos requerimientos de temperatura forzaron el abandono de su cultivo en Holanda durante la crisis del petróleo en los años setenta.

Fuente: Jerez, E.

EL CULTIVO DE LAS HELICONIAS

Cultivos Tropicales, vol. 28, núm. 1, 2007, pp. 29-35

Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA)

La Habana, Cuba

El cultivo de girasol (Helianthus annuus) para flor cortada

El cultivo de girasol (Helianthus annuus) para flor cortada

11.- RECOLECCIÓN

El momento de recolección será cuando las lígulas estén totalmente desarrolladas, si

es posible cuando éstas todavía mantienen una posición próxima a la perpendicular con el capítulo, con el fin de evitar daño en las mismas durante la manipulación y el transporte.

Pero conviene hacer alguna prueba previa para determinar el momento más conveniente,

ya que según variedades u otras circunstancias, se puede dar el caso de que no continúen

su evolución no llegando a alcanzar la apertura total, lo que desmerece su aspecto.

Dependiendo de la altura que tenga en ese momento la parcela a recolectar se podrá

hacer de dos modos: En el caso de que la altura total de la planta esté cerca de la altura

comercial deseada (normalmente entre 80 y 100 cm), se arrancará la planta en su

totalidad cortando la raíz, y si está un poco por encima de esa altura, también un trozo de tallo. En el caso de los cultivares o épocas en que obtengan plantas netamente superiores a lo necesario, incluso más de dos metros, se cortará el tallo a unos 80-100 cm por debajo del capítulo dejando el resto del tallo en la parcela.

Se suelen confeccionar en paquetes de cinco unidades, atándolos con gomas,

igualando los tallos por debajo mediante un corte de tijera.

12.- CONCLUSIONES

El girasol para flor cortada puede ser una interesante opción por las escasas

dificultades técnicas que presenta y adaptación a nuestras condiciones climáticas. Su

aceptación por el consumidor es buena, sin llegar a alcanzar un consumo masivo como

otras especies, por lo cual las cantidades producidas se tienen que adaptar adecuadamente a la demanda de nuestros clientes, ya que en caso contrario podríamos encontrar dificultades en su comercialización.

Fuente: El cultivo de girasol (Helianthus annuus) para flor cortada

Javier Melgares de Aguilar Cormenzana

Consejería de Agricultura, Agua y Medio Ambiente

Plaza Juan XXIII nº 4

30.071 Murcia (España)

fjavier.melgaresdaguilar@carm.es

13.- BIBLIOGRAFIA

·  Alba, A. Llanos, M. El cultivo del girasol. Ediciones Mundiprensa (1.990).

·  Altman, A.; Streitz, D. Die sonnenblume liegt weiter mi trend. TASPO

Gartenbaumagazin (1996).

·  Anónimo. Ediciones Altaya. El mundo secreto de las hierbas 1998.

·  Del Valle L. El cultivo moderno del girasol. . Editorial De Vecchi (1987).

·  Gómez Arnau J. El cultivo del girasol. Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación.

H.D. 20/88 (1.988).

·  Sauer H. Gelbes zieht an: Rudbeckien und Sonenblumen mi topf. TASPO

Gartenbaumagazin (1996).

·  Viorel Vranceanu, A. El girasol. Ediciones Mundiprensa (1.977).

CULTIVO DE GLADIOLO 6. Descripción del Proceso de Producción

CULTIVO DE GLADIOLO

6. Descripción del Proceso de Producción

6.1. Sistemas de plantación

Normalmente al aire libre se suele realizar plantaciones escalonadas

de marzo a junio, y en invernadero, puede empezarse a sembrar de

acuerdo a la fecha cuando queremos obtener la producción.

Al aire libre se puede sembrar a una hilera o a doble hilera. En

invernadero se siembra a mas de cinco hileras para aprovechar el

espacio. Con pasillos en medio de cada melga.

6.2. Preparación del terreno

Antes de roturar el suelo debe adicionarse la materia orgánica para

que esta se mezcle muy bien con el suelo.

Se deberá contar con los análisis del suelo, en los que se estudiarán

los resultados relativos al pH y a la concentración de sales. Se realiza

una labor de fondo a una profundidad de unos 30 o 40 cm. Se deja el

suelo bien suelto y mullido para proceder a su desinfección.

6.3. Desinfección del suelo

Aunque se aplique la rotación de cultivos, es necesario desinfectar el

suelo porque existen muchas especies parásitas polífagas, como el

Fusarium, al que el gladiolo es muy sensible. El suelo se esteriliza

mediante el uso de plaguicidas, para minimizar los efectos de las

plagas y enfermedades, principalmente las originadas por bacterias.

6.4. Construcción de surcos o melgas

Para los de hilera simple se hacen surcos con 50 cm de distancia

entre ellos. Los cormos se dispondrán en distancias de 10 cm entre

ellos

Para hilera doble los surcos son más anchos y las distancias entre

ellos también. Regularmente un surco es de 30 de ancho y la

separación entre ambos es de 70 cm

En ambos caso se obtiene una densidad de siembra de 200, plantas

por ha.

También se construyen pequeñas Melgas de con anchos de 90 cm

hasta 1.80 m donde se disponen cada 10 a 15 cm un cormo en marco

real y una separación de 60 cm. Con este método se tienen

densidades hasta de 500 mil plantas por ha

6.5. Abonado de fondo

Los aportes de materia orgánica no son imprescindibles, salvo que se

pretenda mejorar la estructura del suelo. En caso de aplicarlos, no

debe suministrarse de ninguna manera materia orgánica fresca.

Según sean los niveles de nutrientes del suelo, se utilizara el abonado

de fondo de manera orientativa se recomienda 5 kg/ha de un abono

10-20-30.

6.6. Densidad de plantación

Como lo hemos mostrado las densidades menores a 200,000por ha no

aprovechan el espacio y mayores de 300 mil corren riesgo de tener

problemas con competencia de luminosidad. La densidad de

plantación depende del tamaño de los cormos, de la época de

plantación y de las características de la variedad.

Las densidades muy altas afectan el crecimiento de la planta y de la

espiga. Normalmente, en cultivo al aire libre se utilizan densidades de

plantación menores que en el caso de cultivos en invernadero. Con

cormos más pequeños, mayor puede ser la densidad de plantación.

Plantación al aire libre; La distancia entre plantas será de 10-15 cm y

la distancia entre líneas será de 50 cm.

La profundidad de plantación depende del tipo de suelo y del momento

de cultivo. En general, se planta a menos profundidad en suelos

pesados que en suelos ligeros.

Si se planta en primavera, se recomienda una profundidad de siembra

de 7-10 cm, para asegurar una mayor resistencia al viento y para

evitar que las plantas se tumben en la floración.

Durante el verano conviene plantar con algo más de profundidad 10-

15 cm para evitar enfermedades debidas a la elevada temperatura del

terreno en sus primeros estratos.

Bajo invernadero o túneles de plástico; se recomienda en este caso

contar con invernaderos que se puedan mover fácilmente de sitio, del

tipo arco o establecer un plan de rotaciones cultivando otras flores u

hortalizas en donde ya hubo gladiolos.

En este tipo de cultivo se emplean cormos "tratados" del calibre 14 o

más.

La densidad de plantación puede ser de 20-30 cormos/m2. Para

cultivadores expertos podrán experimentar con mayores densidades.

Fuente: CULTIVO DE GLADIOLO

PROYECTO ESTRATÉGICO PARA LA SEGURIDAD ALIMENTARIA

UNIDAD TÉCNICA NACIONAL

REGIÓN ALTOS DE CHIAPAS.

Tuxtla Gutiérrez, Chiapas.

Orugas pegadoras y enrolladoras de las hojas “Leaftiers, Leafrollers”

LAS PLAGAS COMUNES DEL JARDÍN

Identificación y Manejo Integrado

Orugas pegadoras y enrolladoras

de las hojas

“Leaftiers, Leafrollers”

Estas orugas miden entre 4 mm y 30 mm de longitud. La mayoría son verdes con

tonalidades marrones o grises (Fig. 35B, C).

Las pegadoras de las hojas pegan dos o más hojas con hilos de seda para refugiarse. Se

alimentan de las hojas pegadas y de las circundantes (Fig. 35C). Las enrolladoras

de las hojas se diferencian porque usan una sola hoja como refugio. Una población muy

numerosa de estas plagas puede causar una defoliación severa.

Algunas especies pasan a la etapa de pupa debajo de la hojarasca y objetos que estén

en los alrededores. En otras la pupa se queda pegada en las hojas. Los adultos son

alevillas pequeñas de color marrón opaco.

La distancia entre los extremos de sus alas extendidas varía entre 13 mm y 27 mm.

Manejo integrado de orugas

1. Inspeccione las plantas antes de introducirlas a su lugar de siembra y

rechace las infestadas con orugas y otras plagas.

2. Mantenga los alrededores libres de malezas que le provean alimento a las

orugas.

3. Examine las plantas con frecuencia para detectar las orugas. En caso de no

encontrar orugas en el follaje, busque en el suelo y en los alrededores de la

planta. Separe los tiestos con plantas infestadas.

4. Remueva manualmente las orugas. Use guantes, pinzas, cepillos o espátulas

para removerlas porque algunas irritan la piel. Se recomienda echarlas en un

envase con una solución concentrada de jabón (3% a 5%) para matarlas.

5. Pode las porciones o todo el follaje de las plantas severamente infestadas.

Las partes podadas deben sacarse de las inmediaciones o echarlas en una

bolsa plástica y ponerla al sol. El calor que se genera en el interior de la bolsa

mata la mayoría de los insectos que se encuentren en el material podado.

6. Atraiga los pájaros al jardín. Ellos son enemigos naturales de las orugas y

otros insectos. Coloque comederos cerca del jardín.

7. Aplique un insecticida cuando la infestación alcance niveles inaceptables.

Rocíe todo el follaje, principalmente las áreas abultadas, los renuevos y debajo

de las hojas. A los pegadores y enrolladores de las hojas hay que prestarle una

atención especial. En la mayoría de los casos su control es difícil debido a que

 las larvas permanecen protegidas por las hojas pegadas.

8. Use los insecticidas que contengan la bacteria Bacillus thuringiensis (Bt), ya

que son la mejor opción para el control de orugas. Es recomendable usar estos

insecticidas con un adherente para evitar que la capa cerosa de las hojas repela

la aspersión del insecticida diluido en agua. En el capítulo de insecticidas

biorracionales de este manual aparece información sobre estos insecticidas y de

otros productos ecológicos. Los aceites hortícolas particularmente son eficaces

para matar los huevos de las orugas.

9. Use insecticidas ecológicos para tratar plantas ubicadas en el interior de

residencias y edificios. Los tiestos con plantas infestadas que estén en el interior

de las residencias o edificios deben sacarse al aire libre para recibir allí el tratamiento

 de insecticida.

10. Repita las aplicaciones de insecticidas según sea necesario hasta reducir a

niveles aceptables la población de las orugas. Normalmente hay que repetirlas

entre 7 y 10 días. Inspeccione las plantas entre 24 y 36 horas después de cada

aplicación para comprobar la eficacia del insecticida usado.

11. Controle las orugas cuando estén pequeñas y antes de que causen un daño extenso. Las primeras etapas son las más susceptibles a los insecticidas.

Es una pérdida de tiempo y dinero intentar controlar las orugas cuando están próximas a completar su desarrollo.

Fuente: LAS PLAGAS COMUNES DEL JARDÍN

Identificación y Manejo Integrado

Por: Hipólito O'Farrill-Nieves, Ph.D.

Especialista en Entomología

Silverio Medina Gaud, Ph.D.

Entomólogo y Profesor Emérito